1. 引言
大黄鱼(Larimichthys crocea)隶属硬骨鱼纲、鲈形目、石首鱼科、黄鱼属,为温暖性近海中下层鱼类,是中国现如今养殖规模最大的海水网箱经济鱼类[1] 。
氨氮(NH3-N)和亚硝酸盐(NO2-N)是养殖水体的主要污染物 [2] ,对养殖水产动物具有一定的毒性效应,它们在养殖过程中随着养殖密度及投饵的增加而不断积累,抑制鱼类正常生长,甚至危害鱼的健康 [3] - [6] 。其毒性主要表现为对摄食和生长的抑制 [7] [8] ,对血液指标的影响 [9] - [11] ,对生理指标和组织器官的影响 [12] - [19] ,以及降低机体免疫力 [20] 等。不同的水产动物以及同种动物的不同生长阶段对水质中NH3-N和NO2-N的耐受性不同 [21] 。近年来,关于NH3-N和NO2-N对鱼类 [22] - [25] 、虾 [26] - [28] 、蟹 [29] 等不同水产动物的毒性试验研究已多有见报,而关于NH3-N和NO2-N对大黄鱼苗种的急性毒性研究却尚不多见。为此,本试验研究了总氨氮(NH3-Nt)、非离子氨(NH3-Nm)和(NO2-N)对大黄鱼幼鱼的半致死浓度(LC50)和安全浓度(CS),为大黄鱼苗种养殖的适宜水质环境调控提供科学依据。
2. 材料与方法
2.1. 试验条件与材料
试验地点位于福建官井洋大黄鱼原种场,试验时间为2012年6月,试验大黄鱼苗种全长为90~
120 mm
,为幼鱼阶段,体质健壮,活力好。养殖容器为白色方形塑料箱(70 cm × 55 cm × 45 cm),试验用水为过滤海水,充分曝气,盐度23,水温维持在(25 ± 0.5)℃,pH为7.9~8.1,溶氧量(DO)大于5.0 mg∙L−1,NO2-N质量浓度低于0.03 mg∙L−1,NH3-N质量浓度低于0.02 mg∙L−1。
试验用药剂为氯化铵(NH4Cl)和亚硝酸钠(NaNO2) (分析纯),均配置成10 g∙L−1的母液备用。
2.2. 试验方法
进行预试验,分别配置含NH4Cl和NaNO2不同浓度的水体,放入大黄鱼幼鱼;观察记录大黄鱼的死亡情况,经多次试验得到NH4Cl和NaNO2对大黄鱼的96 h 0%死亡质量浓度(90 h-LC0)和24 h 100%死亡质量浓度(24 h-LC100),以确定NH3-N和NO2-N毒性试验中各试验组的浓度上下限,各自以等对数浓度区间设立7个试验浓度组,包括6个浓度梯度组及1个对照组,其所选取的试验质量浓度如表1所示,每个浓度组(含对照组)设2个平行。试验开始前一天备选幼鱼停食,试验期间不投饵。试验开始时,容器中放入
60 L
海水,不同浓度组分别加入相应剂量的药物,微曝气。每个浓度组放入幼鱼20尾,每24 h更换等药物浓度的试验用水一次,测量水温、溶解氧和pH各一次,并记录24 h、48 h、72 h和96 h大黄鱼幼鱼的死亡数,及时捞除死亡个体,鱼体死亡以鱼体被触动无任何死亡为准。
2.3. 试验数据处理
使用SPSS 15.0软件进行试验数据处理,采用直线内插法求出NH3-N和NO2-N对大黄鱼幼鱼24 h、48 h、72 h和96 h的LC50及95%置信区间,并求出NH3-N和NO2-N对大黄鱼幼鱼的CS。
(1)
NH3-N的两种组成中,NH3-Nm对鱼体的毒害作用远高于离子氨NH3-Nl,是NH3-N中主要的毒性物质,因此计算NH3-N的LC50的同时要计算NH3-Nm的LC50,NH3-Nm浓度的计算公式 [24] 为:
(2)
式中
(3)
3. 试验结果
3.1. 在NH3-N急性毒性试验中的表现
在NH3-N急性毒性试验中,大黄鱼幼鱼有明显应激反应,在低浓度试验组中反应较为缓慢,在高浓度试验组中反应强烈。从NH3-N质量浓度3.00 mg∙L−1开始,幼鱼在试验开始后即表现出不安窜游、时有浮头的症状,但总体较为正常,受惊程度低;NH3-N质量浓度大于11.94 mg∙L−1试验组中,幼鱼在试验开始后即出现躁动、频繁浮头的症状,部分幼鱼有触击塑料箱的行为,6 h后部分幼鱼即活力降低,游动缓慢,并出现侧游、鳃盖微张甚至死亡。幼鱼因为受惊而产生的应激反应随时间而减缓,但由于大黄鱼极易受惊,因受惊而死亡的大黄鱼幼鱼数不可避免。
3.2. 对NH3-N的急性毒性反应结果
NH3-N对大黄鱼幼鱼的急性毒性试验结果显示,NH3-N浓度和其对大黄鱼的毒性呈正相关,和大黄鱼的死亡率呈正相关;在同一NH3-N浓度条件下,NH3-N对鱼体的作用时间与其毒性呈正相关、和大黄鱼死亡率呈正相关(表2)。经直线内插法求出NH3-Nt对大黄鱼幼鱼的24 h、48 h、72 h和96 h LC50及CS,显示结果为11.923 mg∙L−1、8.600 mg∙L−1、7.347 mg∙L−1、6.348 mg∙L−1和0.64 mg∙L−1,其相应的NH3-Nm的CS分别为0.208 mg∙L−1、0.150 mg∙L−1、0.128 mg∙L−1、0.111 mg∙L−1和0.011 mg∙L−1 (表3)。
3.3. 在NO2-N急性毒性试验中的表现
在NO2-N急性毒性试验中,大黄鱼对NO2-N的耐受性较之NH3-N大大升高,试验开始后,不同质量浓度试验组中的鱼体表现出不同程度的呼吸障碍现象,鱼体活力不同程度减弱直至死亡,中毒过程中未发现出躁动不安现象,死亡鱼体身鳃盖张大,倒翻于水面。整个试验过程中未发现因更换试验用水而引起鱼体应激死亡的情况。

Table 1. The mass concentration of NH3-N and NO2-N in this experiment (unit: mg∙L−1)
表1. NH3-N和NO2-N的试验质量浓度表(单位:mg∙L−1)

Table 2. The acute toxic effect of NH3-N on the juvenile L. crocea
表2. 氨氮对大黄鱼幼鱼毒性试验结果

Table 3. The LC50 and CS values of NH3-Nt and NH3-Nm on the juvenile L. crocea
表3. 总氨氮和非离子氨对大黄鱼幼鱼的半致死浓度和安全浓度
3.4. 对NO2-N的急性毒性反应结果
NO2-N对大黄鱼幼鱼的急性毒性试验结果显示,NO2-N浓度和其毒性呈正相关,和大黄鱼的死亡率呈正相关;在NO2-N同一浓度条件下,NO2-N对鱼体的作用时间与其毒性、大黄鱼死亡率呈正相关(表4)。经直线内插法求出NO2-N对大黄鱼的24 h、48 h、72 h和96 h LC50及CS分别为115.675 mg∙L−1、97.881 mg∙L−1、73.107 mg∙L−1、45.730 mg∙L−1和4.57 mg∙L−1 (表5)。

Table 4. The acute toxic effect of NO2-N on the juvenile L. crocea
表4. 亚硝酸盐对大黄鱼幼鱼的毒性试验结果

Table 5. The LC50 and the safe concentrations of NO2-N on the juvenile L. crocea
表5. 亚硝酸盐对大黄鱼幼鱼的半致死浓度和安全浓度
4. 讨论
4.1. NH3-N和NO2-N的毒性分析
养殖水体中的NH3-N主要以NH3-Nl和NH3-Nm两种形式存在,NH3-Nl不能进入细胞膜,无明显毒害。NO2-N对鱼体的毒性主要是由于水体中的NO2-N浓度达到一定程度后,通过鳃丝等组织进入到鱼体中并结合血红蛋白,将血红细胞中的Fe2+氧化成Fe3+,形成不具携氧功能的高铁血红蛋白,血液的载氧能力减弱,造成鱼体组织缺氧,神经麻痹,甚至窒息死亡 [19] 。NH3-Nm为不带电荷的脂溶性小分子,可透过细胞膜或结合血液中血红蛋白,引起鱼体组织中毒,对水生生物的毒性较NH3-Nl强百倍。
随着水环境中NH3-Nm浓度的上升,鱼体中的血氨含量和其他组织中的氨含量增加。NH3-Nm不但进入血淋巴对鳃细胞造成不可逆损伤,还破坏细胞膜,从而导致鱼体各组织中的细胞形态、结构和功能的异常,致使肾、肝等各组织器官出现不同程度的组织损伤 [18] 。洪美玲等 [13] 研究显示,NH3-Nm急性毒性试验中,鱼体的神经系统中毒,表现为抽搐、昏迷,并发生死亡。王志坚等 [14] 研究发现,NH3-Nm能破坏鳃上皮细胞引起窒息并渗进血液刺激糖酵解和三羧酸循环,引起鱼酸中毒和血液携氧量的降低,使水生动物呼吸代谢受阻。PARK等 [17] 研究发现在高浓度NO2-N组中鱼体体表、鳃、肝脏和肾脏己经发生病变。此外,BENLI等 [19] 指出,在高浓度的NO2-N水环境下,鱼体鳃丝基部的泌氯细胞增殖变大、胞内线粒体受损肿大,鳃丝肿大、鳃小片溶解、肝肾严重受损。
4.2. NH3-N和NO2-N对大黄鱼幼鱼的毒性比较
已有研究表明,氨氮中毒时鱼苗的反应较亚硝酸盐中毒更为剧烈。本试验中大黄鱼幼鱼在试验开始时NH3-N质量浓度3.00 mg∙L−1后即表现出不安窜游、时有浮头的症状,而在NO2-N不同质量浓度试验组中的鱼体表现出不同程度的呼吸障碍现象,活力减弱直至死亡,整个过程中未发现出躁动不安现象。试验结果显示,NH3-Nt对大黄鱼的96 h-LC50为6.348 mg∙L−1,NH3-Nm的96 h-LC50为0.111 mg∙L−1;NO2-N对大黄鱼96 h-LC50为45.730 mg∙L−1,说明了同种条件下NH3-Nm对大黄鱼种的毒性远大于NO2-N和NH3-N。这与黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco) [7] 、鳜(Siniperca chuatsi)成鱼 [24] 、斜带石斑鱼(Epinephelus coioides)幼苗 [25] 、凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei) [26] 、沼虾(Macrobrachium tenellum)幼体 [28] 、裸项栉虾虎鱼(Ctenogobius gymnauchen)仔鱼 [30] 、白梭吻鱸(Sander lucioperca)幼体 [31] 、岩原鲤(Procypris rabaudi)幼苗 [32] 等国内外相关研究结论相符。
4.3. NH3-N和NO2-N在大黄鱼养殖过程中的重要性及调控方法
大黄鱼是我国最大规模的海水网箱养殖鱼类和8大优势出口养殖水产品之一,其2012年养殖产量近10 × 104 t,直接产值70多亿元 [33] 。然而,大黄鱼养殖仍以传统的网箱养殖为主,网箱养殖面临着很大的局限性,抗台风能力差、污染严重,其高密度养殖模式和投高蛋白饵料,产生大量的残饵和粪便沉积水底,很容易使水体产生大量的NH3-N和NO2-N,对大黄鱼健康养殖业造成极大的危害,其幼苗对NH3-N和NO2-N的敏感度更强。该试验结果表明池中大黄鱼幼鱼对NH3-N和NO2-N的毒性反应与其在水中的浓度及其作用时间呈正相关关系。JI等 [34] 认为,网箱养殖致使底层有机沉积物堆积,底层微生物活动加剧造成缺氧环境,而无氧或缺氧又促使了微生物的脱氮和硫还原反应,沉积物还原形成具有毒性的硫化氢,毒害鱼体。与此同时,随着海洋港口的建设及相关港口经济产业的发展,致使大黄鱼养殖空间严重萎缩,海区的养殖环境负荷进一步加大。因此,大黄鱼产业亟需探索养殖新模式。目前国内正积极探索发展海水鱼类室内工厂化循环水养殖技术,以谋求产业出路。而NH3-N和NO2-N作为循环水养殖技术中水质调控的关键指标,是核心技术难题。
因此,笔者认为,根据本试验所得NH3-Nt、NH3-Nm和NO2-N的CS,实时监测水质指标,可通过以下3个方向对NH3-N和NO2-N进行调控:
1) 通过硝化菌群加快硝化转化。NH3-N和NO2-N可在硝化菌和亚硝化菌的作用下,转化为硝酸盐(NO3-N),而生成的NO3-N对鱼体无明显毒性,并可被藻类等直接吸收利用。因此,可结合运用固定化技术和生物膜技术,加强微生物的硝化作用,有效降低水体中NH3-N和NO2-N的浓度指标。
2) 调节pH以降低NH3-N毒性。NH3在水体中存在电离平衡(NH3 + H2O
NH3∙H2O
+
),当pH升高时,水体中NH3-Nm浓度增大,NH3-N毒性增加。林忠婷等 [30] 研究表明,适当调低pH、升高盐度可使NH3在NH3-Nt中的比率降低,养殖环境中NO2-N的毒性降低。因此,可适度调节水中pH,以降低NH3-N和NO2-N毒性。
3) 调节溶氧以降低NH3-N和NO2-N毒性。REMEN等 [35] 对大西洋鳕鱼(Gadus morkua)幼鱼的研究发现,高溶氧条件下NH3-Nm对大西洋鳕鱼的毒性作用降低。李波等 [36] 指出,提高水中溶氧量可使黄颡鱼对NH3-N和NO2-N的96 h-LC50大大提高,即黄颡鱼(Pelteobagrus fulvidraco)对两者的耐受性大为提高。徐勇等 [37] 对半滑舌鳎(Cynoglossuss semilaevis)鱼苗在不同溶氧量条件下对氨氮和亚硝酸盐的耐受性研究也表明,过饱和氧可使鱼苗对非离子氨和亚硝酸盐的耐受浓度提高2倍以上。因此,在水中存在大量的NH3-N和NO2-N时加大充氧量,或改用纯氧增氧,保持水中较高的溶氧量,可以降低NH3-N和NO2-N的毒性,对大黄鱼幼鱼的生长和抗病力具有重要的作用。
5. 结论
本研究利用氨氮和亚硝酸盐这两种养殖水体中主要的污染物对全长90~120 mm的大黄鱼苗种的急性毒性反应。结果表明,在水温25℃ ± 0.5℃、盐度23、pH值为8.0 ± 0.1、溶解氧(DO)大于5.0 mg∙L−1条件下,总氨氮(NH3-Nt)的96 h半致死浓度(96 h-LC50)为6.35 mg∙L−1,安全浓度(CS)为0.64 mg∙L−1;非离子氨(NH3-Nm)的96 h-LC50为0.11 mg∙L−1,CS为0.011 mg∙L−1;NO2-N的96 h-LC50为45.73 mg∙L−1,CS为4.57 mg∙L−1。本试验结果表明池中大黄鱼苗种对水中NH3-N和NO2-N的毒性反应与其浓度及其作用时间呈正相关关系。
基金项目
福建省自然科学基金项目(2015J06019),福建省科技平台建设项目(2015N2002),福建省对外合作项目(2015I1002)。