非小细胞肺癌患者Th17细胞、血清IL-17、MMP2的表达在临床病理分期及淋巴结转移的诊断价值
The Diagnostic Value of Th17 Cells, Serum IL-17, and MMP2 Expression in Clinical Pathological Staging and Lymph Node Metastasis in Non-Small Cell Lung Cancer Patients
DOI: 10.12677/ACREM.2024.121001, PDF, HTML, XML, 下载: 56  浏览: 273  科研立项经费支持
作者: 刘延梅:陕西省人民医院西院二病区,陕西 西安;宋荟琴:陕西省铜川矿务局中心医院检验科,陕西 铜川;黄晓燕*:陕西省人民医院陕西省感染与免疫疾病重点实验室,陕西 西安
关键词: 非小细胞肺癌Th17细胞IL-17MMP2 Non-Small Cell Lung Cancer Th17 Cells Serum Interleukin-17 Matrix Metalloproteinases
摘要: 目的:探讨Th17细胞、血清白细胞介素-17 (IL-17)、基质金属蛋白酶(MMP2)在非小细胞肺癌(NSCLC)临床分期及淋巴结转移中的临床应用价值。方法:选取2022年11月~2023年10月入住于陕西省人民医院的42例NSCLC患者(NSCLC组)及40例肺良性病变患者(对照组),采用流式细胞术检测各组外周血Th17细胞水平,采用酶联免疫吸附法(ELISA)测定血清中IL-17和MMP2水平,评估这三个检测指标在NSCLC临床分期和淋巴结转移中的应用价值及三者联合检测的诊断效能。结果:NSCLC组中,与I~II期患者对比,III~IV期患者外周血Th17细胞水平明显增高,血清IL-17和MMP2水平也明显较高,差异均有统计学意义(均p < 0.05);NSCLC组中,淋巴结转移者Th细胞水平、血清IL-17和MMP-2水平与未转移者对比,明显较高,差异均有统计学意义(均p < 0.05);Th17,IL-17和MMP2三项联合检测准确度、特异度、灵敏度分别为95.71%,93.84%和97.22%,与单项检测对比,均明显较高,差异均有统计学意义(均p < 0.05)。结论:Th17细胞,IL-17和MMP2在NSCLC与NSCLC临床分期及淋巴结转移中有一定关联,三者联合检测,有助于NSCLC的鉴别诊断。
Abstract: Objective: To explore the clinical application value of Th17 cells, serum interleukin-17 (IL-17), and matrix metalloproteinases (MMP2) in the clinical staging and lymph node metastasis of non-small cell lung cancer (NSCLC). Methods: 42 NSCLC patients (NSCLC group) and 40 patients with benign lung lesions (control group) admitted to Shaanxi Provincial People’s Hospital from November 2022 to October 2023 were se-lected. Flow cytometry was used to detect peripheral blood Th17 cell levels in each group, and en-zyme-linked immunosorbent assay (ELISA) was used to measure IL-17 and MMP2 levels in the se-rum. The application value of these three detection indicators in clinical staging and lymph node metastasis of NSCLC, as well as the diagnostic efficacy of their combined detection were evaluated. Results: In the NSCLC group, compared with patients in stages I~II, patients in stages III~IV showed a significant increase in peripheral blood Th17 cell levels, as well as significantly higher serum IL-17 and MMP2 levels, with statistical significance (all p < 0.05); in the NSCLC group, the levels of Th cells, serum IL-17, and MMP-2 were significantly higher in patients with lymph node metastasis compared to those without metastasis, and the differences were statistically significant (all p < 0.05); the accuracy, specificity, and sensitivity of the combined detection of Th17, IL-17, and MMP2 were 95.71%, 93.84%, and 97.22%, respectively. Compared with single detection, they were significantly higher, and the differences were statistically significant (all p < 0.05). Conclusion: Th17 cells, IL-17, and MMP2 are associated with clinical staging and lymph node metastasis in NSCLC, and their combined detection can help in the differential diagnosis of NSCLC.
文章引用:刘延梅, 宋荟琴, 黄晓燕. 非小细胞肺癌患者Th17细胞、血清IL-17、MMP2的表达在临床病理分期及淋巴结转移的诊断价值[J]. 亚洲急诊医学病例研究, 2024, 12(1): 1-7. https://doi.org/10.12677/ACREM.2024.121001

1. 引言

肺癌是公认的发病率高、预后差的恶性肿瘤,对人类的生命健康构成了巨大的威胁 [1] 。每年死于肺癌的人数预计在160万人左右,其中有85%的肺癌在组织学上的分类为非小细胞肺癌(nonsmall cell lung cancer, NSCLC),由于NSCLC早期无典型症状及体征,发现及确诊时已到中晚期 [2] 。目前NSCLC治疗的主要策略包括手术、放疗和化疗。手术和放疗通常用于切除肿瘤病灶,而化疗在临床实践中主要作为术后辅助治疗 [3] ,但适宜手术治疗者仅为20%~30%,术后仍有60%患者存活不满5年,追其原因是25%~50%的病例会在疾病转归过程中发生转移 [4] 。因此,在临床分期和转移前提高诊断率,简化诊断方式,推广无创有效的诊断方法对NSCLC患者的早期诊断、预防治疗等有重要意义。

近年的研究中发现一种新型的CD4+效应T细胞即Th17细胞参与了恶性肿瘤的病理发展过程 [5] 。白细胞介素-17 (interleukin-17, IL-17)是一种前炎性细胞因子,由Th17细胞分泌,具有很强的募集中性粒细胞、促进炎性因子释放作用,通过与IL-17受体结合,使下游基因表达细胞因子 [6] ,且可通过Th17参与细胞免疫,IL-17与肿瘤的发生发展密切相关 [7] 。有科学家在鼠模型体内发现,IL-17等Th17细胞相关因子可能参与了NSCLC的发生发展过程 [8] 。基质金属蛋白酶(Matrix metalloproteinase, MMP)中的MMP-2是机体中主要的IV型胶原降解酶,在肿瘤的形成过程中起重要作用 [9] 。本研究拟探讨Th17细胞、IL-17、MMP2在NSCLC临床分期及淋巴结转移中的临床应用价值,及评估三者联合检测的效能。

2. 材料与方法

2.1. 研究对象

选取陕西省人民医院2022年11月~2023年10月经病理检验确诊的42例NSCLC患者(NSCLC组)及40例肺良性病变患者(良性病变组)为观察对象。NSCLC组纳入标准 [10] :① 患者符合NSCLC诊断标准,且经病理检验确诊;② 患者心、肝、肾、胃功能正常;③ 入组前未接受相关放疗、化疗、免疫治疗;④ 预计生存期超3个月;⑤ 患者临床资料完整。NSCLC组排除标准:① 临床资料不全者;② 患有慢性阻塞性肺病、支气管哮喘等急慢性感染。③ 伴多发性硬化症、红斑狼疮、类风湿性关节炎等自身免疫性疾病;④ 并发其他恶性肿瘤;⑤ 妊娠期、哺乳期女性。NSCLC组:男性30例,女性12例,年龄22~65岁,平均年龄48.03 ± 5.14岁。腺癌28例,鳞癌14例。TNM分期:I期8例,II期12例,III期15例,IV期7例。淋巴结转移:有27例,无15例。良性病变组患者入组前均经CT与病理确诊,排除癌前病变,男性22例,女性18例,年龄27~65岁,平均年龄46.14 ± 4.28岁。两组患者性别、年龄对比差异无统计学意义(p > 0.05),有可比性。以上患者均知情同意并经陕西省人民医院伦理委员会批准。

2.2. 仪器与试剂

采用流式细胞术检测各组外周血Th17细胞水平,采用酶联免疫吸附法(ELISA)测定血清中IL-17和MMP2水平,ELISA试剂盒由武汉伊莱瑞特有限公司提供,所有操作严格按照试剂盒说明书进行。

2.3. 方法

流式细胞检测:空腹抽取患者每人肘静脉血6 ml,其中肝素抗凝血3 mL,用于流式细胞检测;促凝剂处理的血液3 mL,用于ELISA检测。肝素抗凝血采用淋巴细胞分离液密度梯度离心(2000 r/min离心20 min)分离单个核细胞。每组取5 × 104细胞移入至流式管,向流式管中加入荧光抗体FITC-CD3和PerCP-CD4各10 μL,室温避光反应15 min。1500 r/min速率离心5 min,弃上清。在沉淀中加入Fixation/pormeabilization破膜剂1 mL,混匀室温放置20 min。加入PBS洗液2 mL,1500 r/min速率离心5 min,弃去上清液,留下沉淀。加入10 μL荧光标记的PE-IL17进行细胞内染色,避光反应30 min。加入PBS洗液2 mL,1500 r/min速率离心5 min,弃去上清液,留下沉淀。如此重复洗涤两次后,加入500 μL PBS重悬细胞进行流式检测。

ELISA检测:促凝剂处理的血液常温静置2 h,按2500 r/min离心10 min,分离血清。配置不同浓度标准品,然后将标本和不同浓度标准品加入相应板孔,再加入相应的生物标记素进行标记,置于37℃孵育60 min。洗板4次后,分别加入抗人IL-17和MMP2生物素化的抗体进行反应,37℃孵育60 min,加入特异性酶溶液作用后洗板,加入显色液终止反应,测其OD值,通过绘制标准曲线计算得出IL-17和MMP2的含量。

2.4. 观察指标

观察指标如下:① 比较Th17,IL-17和MMP2在NSCLC组和良性病变组中的表达。② 比较NSCLC组内I~II期和III~IV期患者Th17、IL-17和MMP表达情况。③ 比较NSCLC组内淋巴结转移和无转移患者Th17、IL-17和MMP2表达情况。④ 计算Th17、IL-17和MMP2单项诊断及三项联合诊断准确度、特异度、敏感度,其中准确度 = (真阳性 + 真阴性)/总例数 × 100%;灵敏度 = 真阳性/(真阳性 + 假阴性 × 100%。特异度 = 真阴性/(真阴性 + 假阳性) × 100%。

2.5. 统计学分析

将研究数据纳入SPSS22.0统计学软件中,计数资料用百分率(%)表示,使用χ2检验;计量资料用均数 ± 标准差(x ± s)表示,使用方差分析进行组间比较,经t检验,p < 0.05为差异有统计学意义。

3. 结果

1) NSCLC组和良性病变组血清CA724,NSE和PGR水平比较见表1。NSCLC组患者CA724,NSE和PGR水平与肺良性病变组对比,两组间差异均具有统计学意义(p < 0.05)。

Table 1. Comparison of Th17, IL-17 and MMP2 levels between NSCLC group and benign lesion group (x ± s)

表1. NSCLC组和良性病变组患者Th17、IL-17和MMP2水平比较(x ± s)

2) 不同NSCLC临床病理分期患者Th17、IL-17和MMP2水平比较见表2。NSCLC组中,III~IV期患者血清CA724,NSE和PGR水平与I~II 期患者比较,两组间差异具有统计学意义(p < 0.05)。

Table 2. Comparison of Th17, IL-17 and MMP2 levels in patients with different clinicopathological stages of NSCLC (x ± s)

表2. 不同NSCLC临床病理分期患者Th17、IL-17和MMP2水平比较(x ± s)

3) NSCLC淋巴结转移组患者与无淋巴结转移组患者血清Th17、IL-17和MMP2水平比较见表3。NSCLC组中淋巴结转移组患者Th17、IL-17和MMP2水平与无淋巴结转移组患者比较,两组间差异具有统计学意义(p < 0.05)。

Table 3. Comparison of Th17, IL-17 and MMP2 levels between NSCLC lymph node metastasis group and non-lymph node metastasis group (x ± s)

表3. NSCLC淋巴结转移组与无淋巴结转移组Th17、IL-17和MMP2水平比较(x ± s)

4) Th17、IL-17和MMP2单项及三项联合诊断效能比较见表4。Th17、IL-17和MMP2联合诊断准确度、特异度、灵敏度与单项检测比较,两组间差异有统计学意义(p < 0.05)。

Table 4. Comparison of accuracy, specificity and sensitivity of Th17, IL-17 and MMP2 single and combined detection (%)

表4. Th17、IL-17和MMP2单项及三项联合检测准确度、特异度、灵敏度比较(%)

4. 讨论

NSCLC是一种临床常见的肺部恶性肿瘤,占所有肺癌的80%,具有高发病率和病死率特点 [11] ,且近年来呈上升趋势,严重影响患者生命健康 [12] 。目前手术切除、放疗、化疗和联合治疗作为NSCLC的主要治疗手段,显著提高了NSCLC患者的生存率 [13] 。然而,NSCLC发病隐匿,早期临床体征不明显,由于缺乏有效的早期诊断标记物,往往确诊时已进入中晚期,且25%~40%的病例会在疾病转归过程中发生转移 [14] 。目前,临床症状和影像学检查对于微小病灶等的检出效果较一般,仅60%~70%,病理学检查为诊断金标准,但有一定创伤性 [15] ,因此,开发NSCLC早期的诊断性生物标志物和治疗靶点尤为重要。

本研究中,我们通过流式细胞术检测NSCLC和肺良性病变患者外周血Th17细胞水平,结果显示NSCLC患者外周血中Th17细胞水平明显高于良性病变组,且在NSCLC组中,III~IV期及淋巴结转移患者Th17细胞水平明显升高。这表明Th17细胞容易趋化到肺癌组织内,且在肺癌组织局部呈高表达。有研究发现肿瘤细胞与肿瘤成纤维细胞能分泌趋化因子RANTES与单核细胞趋化蛋白1 (MCP-1),诱导Th17细胞在肿瘤局部聚集增殖 [16] ;此外,肿瘤微环境中肿瘤细胞会分泌一些促进Th17细胞增殖所需要的细胞因子,这对Th17细胞的分化有着至关重要的促进作用,其中以分泌的IL-17最常见 [17] 。这验证了本研究中IL-17结果,即NSCLC患者外周血中IL-17水平明显高于良性病变组,且在NSCLC组中,III~IV期及淋巴结转移患者IL-17水平明显升高。IL-17与炎性反应和免疫活动有密切关系,有学者认为IL-17可能通过趋炎反应促进局部肿瘤的血管生成及侵袭转移,也可诱导PI3K/AKT通路 [18] ,使抗凋亡 [19] 、促血管生成等基因的表达上调 [20] ,促肿瘤发生发展。

MMP2与肿瘤的浸润和转移密切相关,由肿瘤细胞和间质细胞分泌,参与降解3型胶原、纤维黏连蛋白等胞外基质成分 [21] 。肿瘤细胞的持续性生长和转移均有MMP2的参与,MMP2是肿瘤新生血管形成的关键 [22] ,其可促进VEGF的表达 [23] ,从而使血管内皮细胞增殖,使血管通透性增加 [24] ,使血管内皮细胞外基质降解,进而为血管生长及延伸提供基础 [25] 。这完全解释了我们研究结果中NSCLC患者外周血中MMP2水平明显高于良性病变组,且在III~IV期及淋巴结转移患者中明显升高。

同时,本研究结果提示,Th17、IL-17和MMP2联合检测,在NSCLC诊断中的准确度、特异度及灵敏度分别95.71%、93.84%和97.22%,均明显高于单一检测,提示三种指标联合检测的诊断效能较好。

5. 结论

综上所述,Th17、IL-17和MMP2在NSCLC患者中表达异常,并能反映NSCLC临床分期及淋巴结转移程度,且三项联合检测具有较高诊断效能,可为NSCLC诊治提供可靠参考。

基金项目

陕西省人民医院科技发展孵化基金项目(2021YJY-29),陕西省人民医院菁英人才项目(2021JY-48)。

NOTES

*通讯作者。

参考文献

[1] Adams, S.J., Stone, E., Baldwin, D.R., et al. (2023) Lung Cancer Screening. The Lancet, 401, 390-408.
https://doi.org/10.1016/S0140-6736(22)01694-4
[2] Wong, K.Y., Cheung, A.H., Chen, B., et al. (2022) Can-cer-Associated Fibroblasts in Nonsmall Cell Lung Cancer: From Molecular Mechanisms to Clinical Implications. Inter-national Journal of Cancer, 151, 1195-1215.
https://doi.org/10.1002/ijc.34127
[3] Jachowski, A., Marcinkowski, M., Szydlowski, J., et al. (2023) Modern Therapies of Nonsmall Cell Lung Cancer. Journal of Applied Genetics, 64, 695-711.
https://doi.org/10.1007/s13353-023-00786-4
[4] Abbosh, C., Frankell, A.M., Harrison, T., et al. (2023) Tracking Early Lung Cancer Metastatic Dissemination in TRACERx Using ctDNA. Nature, 616, 553-562.
https://doi.org/10.1038/s41586-023-05776-4
[5] Yasuda, K., Takeuchi, Y. and Hirota, K. (2019) The Pathogenic-ity of Th17 Cells in Autoimmune Diseases. Seminars in Immunopathology, 41, 283-297.
https://doi.org/10.1007/s00281-019-00733-8
[6] Meehan, E.V. and Wang, K. (2022) Interleukin-17 Family Cyto-kines in Metabolic Disorders and Cancer. Genes (Basel), 13, Article No. 1643.
https://doi.org/10.3390/genes13091643
[7] Luo, Q., Liu, Y., Shi, K., et al. (2023) An Autonomous Activation of Interleukin-17 Receptor Signaling Sustains Inflammation and Promotes Disease Progression. Immunity, 56, 2006-2020.
https://doi.org/10.1016/j.immuni.2023.06.012
[8] Li, G., Chen, H., Liu, L., et al. (2021) Role of Interleukin-17 in Acute Pancreatitis. Frontiers in Immunology, 12, Article ID: 674803.
https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.674803
[9] Wadowska, K., Blasiak, P., Rzechonek, A., et al. (2023) Analysis of Mmp-2-735c/T (Rs2285053) and Mmp-9-1562c/T (Rs3918242) Polymorphisms in the Risk Assessment of Devel-oping Lung Cancer. International Journal of Molecular Sciences, 24, Article No. 10576.
https://doi.org/10.3390/ijms241310576
[10] Cannone, G., Comacchio, G.M., Pasello, G., et al. (2023) Precision Surgery in NSCLC. Cancers (Basel), 15, Article No. 1571.
https://doi.org/10.3390/cancers15051571
[11] Salvicchi, A., Tombelli, S., Mugnaini, G., et al. (2023) Lung Seg-mentectomy in NSCLC Surgery. Life (Basel), 13, Article No. 1284.
https://doi.org/10.3390/life13061284
[12] Buriolla, S., Pelizzari, G., Corvaja, C., et al. (2022) Immunotherapy in NSCLC Patients with Brain Metastases. International Journal of Molecular Sciences, 23, Article No. 7068.
https://doi.org/10.3390/ijms23137068
[13] Bravaccini, S., Bronte, G. and Ulivi, P. (2021) TMB in NSCLC: A Broken Dream? International Journal of Molecular Sciences, 22, Article No. 6536.
https://doi.org/10.3390/ijms22126536
[14] (2023) Adagrasib (Krazati) for NSCLC. The Medical Letter on Drugs and Therapeutics, 65, E17-E18.
https://doi.org/10.58347/tml.2023.1668f
[15] Chen, H., Katakura, S., Horita, N., et al. (2022) Immunohistochemi-cal Markers to Diagnose Primary Squamous Cell Carcinoma of the Lung: A Meta-Analysis of Diagnostic Test Accuracy. Therapeutic Advances in Medical Oncology, 14, Article ID: 17490112.
https://doi.org/10.1177/17588359211065152
[16] Bechara, R., Amatya, N., Majumder, S., et al. (2022) The RNA-Binding Protein Imp2 Drives a Stromal-Th17 Cell Circuit in Autoimmune Neuroinflammation. JCI Insight, 7, e152766.
https://doi.org/10.1172/jci.insight.152766
[17] Tangye, S.G. and Puel, A. (2023) The Th17/Il-17 Axis and Host Defense against Fungal Infections. The Journal of Allergy and Clinical Immunology: In Practice, 11, 1624-1634.
https://doi.org/10.1016/j.jaip.2023.04.015
[18] Cong, L.H., Li, T., Wang, H., et al. (2020) Il-17a-Producing T Cells Exacerbate Fine Particulate Matter-Induced Lung Inflammation and Fibrosis by Inhibiting Pi3k/Akt/Mtor-Mediated Autophagy. Journal of Cellular and Molecular Medicine, 24, 8532-8544.
https://doi.org/10.1111/jcmm.15475
[19] Paira, D.A., Silvera-Ruiz, S., Tissera, A., et al. (2022) Interferon Gamma, Il-17, and Il-1beta Impair Sperm Motility and Viability and Induce Sperm Apoptosis. Cytokine, 152, Article ID: 155834.
https://doi.org/10.1016/j.cyto.2022.155834
[20] Nicola, S., Ridolfi, I., Rolla, G., et al. (2021) Il-17 Promotes Nitric Oxide Production in Non-Small-Cell Lung Cancer. Journal of Clinical Medicine, 10, Article No. 4572.
https://doi.org/10.3390/jcm10194572
[21] Zhou, X., Zhang, C., Zhou, Q., et al. (2023) Imaging Application of an Mmp2-Sensitive Tumor-Targeted Prussian Blue Fluorescent Nanoprobe. Journal of Biomaterials Applications, 38, 372-380.
https://doi.org/10.1177/08853282231194147
[22] Goggins, E., Mironchik, Y., Kakkad, S., et al. (2023) Repro-gramming of Vegf-Mediated Extracellular Matrix Changes through Autocrine Signaling. Cancer Biology & Therapy, 24, Article ID: 2184145.
https://doi.org/10.1080/15384047.2023.2184145
[23] Taghizadeh, S., Soheili, Z.S., Sadeghi, M., et al. (2021) Sflt01 Modulates Invasion and Metastasis in Prostate Cancer Du145 Cells by Inhibition of Vegf/Grp78/Mmp2&9 Axis. BMC Molecular and Cell Biology, 22, Article No. 30.
https://doi.org/10.1186/s12860-021-00367-5
[24] Hu, C., Jing, R., Wen, C., et al. (2023) Hnf4a Negatively Regu-lated Posterior Capsular Opacification via Transcriptional Inhibition of Mmp2. Current Eye Research, 48, 627-638.
https://doi.org/10.1080/02713683.2023.2195138
[25] Hsu, P.L., Chien, C.W., Tang, Y.A., et al. (2023) Targeting Brd3 Eradicates Nuclear Tyro3-Induced Colorectal Cancer Metastasis. Science Advances, 9, Eade3422.
https://doi.org/10.1126/sciadv.ade3422