脱细胞猪小肠粘膜下层基质材料中生长因子的定量检测
Quantitative Detection of Growth Factors in Porcine Small Intestinal Submucosa Matrix Materials
DOI: 10.12677/MS.2018.85070, PDF,    科研立项经费支持
作者: 张 扬, 夏磊磊, 门福民, 郑晓龙, 张晋辉, 陈 毅*, 赵 博：北京博辉瑞进生物科技有限公司，北京；高建萍：中国科学院过程工程研究所生化工程国家重点实验室，北京
关键词: 猪小肠粘膜下层；脱细胞基质；转化生长因子；碱性成纤维细胞生长因子；血管内皮生长因子；Porcine Small Intestinal Submucosa； Acellular Matrix； Transforming Growth Factor； Basic Fibroblast Growth Factor； Vascular Endothelial Growth Factor
摘要: 采取液氮冷冻粉碎技术将猪小肠粘膜下层脱细胞基质(SIS, Small Intestinal Submucosa)粉碎，再通过预处理将SIS材料中的三种活性生长因子包括碱性成纤维细胞生长因子(FGF2)、转化生长因子(TGFβ1)和血管内皮生长因子(VEGF)释放出来，以便采用特异性酶联免疫(ELISA)试剂盒检测，进而得到样品中三种活性生长因子的含量。两种不同的SIS产品(VIDASISTM和Biodesign®)中的检测结果表明：VIDASISTM中TGFβ1的的含量为8375 ± 2125 pg/g、VEGF的含量为5486 ± 1043 pg/g、FGF2的含量为3990 ± 1372 pg/g；Biodesign®中TGFβ1的的含量为11517 ± 331 pg/g、VEGF的含量为5432 ± 272 pg/g、FGF2的含量为5417 ± 947 pg/g。
Abstract: In this study, three growth factors including basic fibroblast growth factor (FGF2), transforming growth factor β1 (TGFβ1) and vascular endothelial growth factor (VEGF) in two SIS products (VIDASISTM and Biodesign®) were quantified by enzyme linked immune sorbent assay (ELISA) kit through the preliminary treatment of liquid nitrogen freezing and grinding technology which was aimed to release the growth factors from the tissue. Results showed that contents of TGFβ1, VEGF and FGF2 in VIDASISTM were 8375 ± 2125 pg/g, 5486 ± 1043 pg/g and 3990 ± 1372 pg/g respec-tively; while the corresponding contents in Biodesign® were 11517 ± 1331 pg/g, 5432 ± 272 pg/g and 5417 ± 947 pg/g.
文章引用：张扬, 夏磊磊, 高建萍, 门福民, 郑晓龙, 张晋辉, 陈毅, 赵博. 脱细胞猪小肠粘膜下层基质材料中生长因子的定量检测[J]. 材料科学, 2018, 8(5): 595-602. https://doi.org/10.12677/MS.2018.85070

参考文献

[1] 夏磊磊, 陈毅, 门福民, 等. 不同组织来源的胶原蛋白生物材料物理性能对比研究[J]. 材料科学, 2017, 7(4): 431-439.
[2] 陈毅, 夏磊磊, 张扬, 等. 脱细胞猪小肠黏膜下层基质中纤维连接蛋白定量检测方法研究[J]. 生物学杂志, 2018, 35(2): 97-100.
[3] 林茂虎, 郁华亮, 苗芮, 等. 小肠粘膜下层在膀胱组织修复中生长因子释放的研究[J]. 中国康复理论与实践, 2006, 12(7): 578-580.
[4] Traverse, J.H. (2012) Using Biomaterials to Improve the Efficacy of Cell Therapy Following Acute My-ocardial Infarction. Journal of Cardiovascular Translational Research, 5, 67-72.
[Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]
[5] Discher, D.E., Mooney, D.J. and Zandstra, P.W. (2009) Growth Factors, Ma-trices, and Forces Combine and Control Stem Cells. Science, 324, 1673-1677.
[Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]
[6] 丁珊珊, 崔元璐, 宫政, 等. 肝素在生长因子控制释放中的应用[J]. 化学进展, 2008, 20(12): 1998-2011.
[7] 付小兵, 程飚, 盛志勇. 生长因子应用于临床创伤修复——十年的主要进展与展望[J]. 中国修复重建外科杂志, 2004, 6(6): 508-512.
[8] 张莉莉, 李玉坤. 生长因子对骨代谢影响的研究进展[J]. 国际药学研究杂志, 2012, 39(2): 121-126.
[9] 肖亚南, 张启芳. 转化生长因子β与炎症性肠病的相关性研究进展[J]. 广西医学, 2017, 39(12): 1908-1911.
[10] 徐蕴, 韩树斋. 转化生长因子-β1在肿瘤发生发展中的作用[J]. 济宁医学院学报, 2017, 40(6): 429-433.
[11] 冯璐, 狄国虎, 周庆军. 血管内皮生长因子及其受体家族在角膜组织及角膜病变中的作用和研究进展[J]. 中国组织工程研究, 2016, 20(11): 1644-1650.
[12] 吴素英. 碱性成纤维细胞生长因子与小儿烧伤创面的愈合[J]. 中国组织工程研究, 2012, 16(33): 6215-6222.
[13] Hodde, J., Janis, A., Ernst, D., et al. (2007) Effects of Sterilization on an Extracellular Matrix Scaffold: Part I. Composition and Matrix Architecture. Journal of Materials Science Materials in Medicine, 18, 537-543.
[Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]
[14] 滕世峰. 基于两种制作猪小肠粘膜下层细胞基质方式的研究[D]: [硕士学位论文]. 上海: 第二军医大学, 2016.

为你推荐