1. 引言
芭蕉来源于芭蕉科植物芭蕉(Musa basjoo Sied. et Zucc.),其根、茎、叶均有清热,解毒,止渴,利尿之功效,主治天行热病、烦闷、消渴、黄疸、惊风、高血压头痛、疔疮痈疽、中耳炎、烫伤、水肿、中暑等 [1] [2]。目前关于芭蕉的研究主要集中于芭蕉根,芭蕉根石油醚部位可较好地抑制醋酸所致小鼠扭体反应;对小鼠急性慢性炎症有明显的抑制作用和抑菌作用 [3] [4]。芭蕉根提取物能抑制α-葡萄糖苷酶活性以及MRSA和ESBLs [5],还有研究发现芭蕉根的有效部位中的三萜类成分羽扇豆酮能够降低糖尿病小鼠的血糖,能增加正常小鼠糖负荷,改善糖耐量 [6]。芭蕉根有潜在药用价值,但芭蕉挖根后,植株不可再生,而地上部位茎、叶多被丢弃,不仅污染环境,还造成资源大量的浪费。芭蕉茎和芭蕉叶,与芭蕉根均具有清热、解毒功效,而芭蕉茎、叶能否替代芭蕉根进行开发利用,有待进一步研究。
在中药材资源日益匮乏的背景下,中药材资源保护与开发利用已成为了研究的热点,如进行药材替代资源的寻找,开展相关方面的研究则是利用动植物间的亲源关系,探寻基原关系相近的动植物品种–成分–药效的相关性,寻找和扩大新药源,发掘药用动植物的类同品和替代品,或者通过同植株不同部位的药材来评估其相似性的科学价值。
芭蕉根含有可治疗糖尿病的有效成分羽扇豆酮和豆甾醇等,但对于芭蕉根同植株的其它部位是否也含有羽扇豆酮和豆甾醇等成分及含量尚未明确,因此本文采用高液相色谱法(HPLC)拟测定同植株不同部位的芭蕉根、茎和叶药材中羽扇豆酮和豆甾醇的含量,以期为芭蕉茎、叶能否替代根作为羽扇豆酮和豆甾醇原药材来源提供参考。
2. 仪器与试药
2.1. 仪器
Waters 2695型高效液相色谱仪(美国Waters公司,2998二极管阵列检测器);超声波清洗仪(HS-10260T,天津市恒奥科技发展);数显恒温水浴锅(HH-6,常州澳华仪器)等。
2.2. 试药
药材经贵州中医药大学吴红梅副教授鉴定为芭蕉科植物Musa basjoo Sied. et Zucc.的根、茎和叶,来源见表1;豆甾醇对照品(成都曼思特生物科技有限公司,批号:MUST-17062802,纯度 ≥ 95.54%);羽扇豆酮对照品纯度 ≥ 98% (由贵州中医药大学药物分析实验室提供);甲醇、乙腈为色谱纯(天津科密欧),其余为分析纯;水为娃哈哈纯净水。
Table 1. Sources of medicinal materials
表1. 药材来源
3. 方法与结果
3.1. 色谱条件
色谱柱:Diamonsil-C18 (4.6 mm × 250 mm,5 μm);流速:0.8 ml/min;检测波长:206 nm;流动相:甲醇–乙腈(体积比50:50),等度洗脱50 min;柱温:30℃;进样量:10 μL。
3.2. 供试品溶液制备
精密称取样品粉末约1.0 g,放入100 ml圆底烧瓶中,加入50 ml甲醇,水浴回流2次(每次1.5 h),过滤,合并滤液。挥干,所得残渣用色谱甲醇溶解,并转移至10 ml容量瓶中,加甲醇定容至刻度线,摇匀,然后用0.22 μm的微孔滤膜过滤,取续滤液,备用。
3.3. 对照品溶液制备
精密称取羽扇豆酮对照品、豆甾醇对照品适量,分别置容量瓶中,加色谱甲醇至刻度线,分别得到0.4008 mg/ml、0.6004 mg/ml的对照品母液;分别取上述对照品母液适量,加色谱甲醇稀释制成羽扇豆酮浓度为6.26 µg/ml,12.5 µg/ml,25.0 µg/ml,50.1 µg/ml,75.2 µg/ml,100.2 µg/ml,150.3 µg/ml;豆甾醇浓度为11.26 µg/ml,22.5 µg/ml,45.0 µg/ml,90.0 µg/ml,135.1 µg/ml,180.1 µg/ml,270.2 µg/ml的对照品混合溶液。
3.4. 方法学考察
3.4.1. 线性关系的考察
分别吸取3.3项下的混合对照品溶液10 μl,分别注入仪器,按“3.1”项下的色谱条件,记录羽扇豆酮和豆甾醇的峰面积,以峰面积积分值为纵坐标,浓度(µg/ml)作为横坐标,得到羽扇豆酮的线性方程为
,豆甾醇的线性方程为
,结果表明羽扇豆酮和豆甾醇的浓度分别在6.26~150.3 µg/ml和11.26~270.2 µg/ml之间的线性关系良好。见图1和图2。
Figure 2. Standard curve of stigmasterol
图2. 豆甾醇标准曲线图
3.4.2. 精密度试验
精密吸取羽扇豆酮和豆甾醇混合对照品溶液10 μl,重复进样6次,分别记录羽扇豆酮和豆甾醇的峰面积,结果其RSD值分别为0.97%、0.85%,均<3.0%,表明仪器的精密度好,见表2。
3.4.3. 稳定性试验
取供试品(贵州金沙县沙土镇芭蕉根)溶液,分别于0,2,4,8,12,24,48 h时进样测定,并记录羽扇豆酮和豆甾醇的峰面积,结果其RSD值分别为0.94%、0.78%,均<3.0%,表明供试品溶液在48 h内稳定,见表3。
3.4.4. 重复性试验
精密称取同一批次芭蕉根粉末样品1.0 g,共6份,按“2.2”项下的方法制备供试品溶液,在“2.1”项下色谱条件进行测定,并记录峰面积,结果其RSD值分别为0.82%、0.88%,均<3.0%,表明方法重复性良好,见表4。
Table 4. Repeatability test results
表4. 重复性试验结果
3.4.5. 加样回收率试验
精密称取已知羽扇豆酮含量(118.79 µg/g)和豆甾醇含量(207.93 µg/g)的芭蕉根(贵州省金沙县沙土镇)粉末6份,每份约0.5 g,置圆底烧瓶中,加入适量的羽扇豆酮对照品和豆甾醇对照品混合液,按“3.2”项下方法制备供试品溶液,按“3.1”项下色谱条件进行测定,计算含量。结果其平均加样回收率分别为100.32%、99.23%,在95%~105%之间,详细数据见表5。
Table 5. Test results of recovery rate
表5. 加样回收率试验结果
3.5. 同一植株不同部位的芭蕉根,茎和叶药材中羽扇豆酮和豆甾醇的含量测定
取同一植株不同部位(根、茎、叶)的芭蕉药材粉末,共42批,按“3.2”项下方法制备供试品溶液,在“3.1”项下色谱条件测定样品中羽扇豆酮和豆甾醇的含量,记录峰面积,以羽扇豆酮对照品和豆甾醇对照品作为对照,按羽扇豆酮的线性方程
,豆甾醇的线性方程
分别计算羽扇豆酮和豆甾醇的含量,含量结果见表6,图3。
Table 6. Content determination results ( x ¯ ± S , n = 3)
表6. 含量测定结果(
, n = 3)
“-”表示未检测到。
3.5.1. 含量测定结果差异性分析
将上述表6的含量结果导入SPSS26.0,统计采自不同产地的同一植株不同部位芭蕉药材的羽扇豆酮和豆甾醇含量的差异,并分别进行了比较,结果表明,14株芭蕉药材中,同一植株的芭蕉根、茎药材中的羽扇豆酮含量差异较大,通过均值比较,芭蕉茎药材中的羽扇豆酮含量均高于同植株的芭蕉根,其差异有统计学意义。同一植株的芭蕉根、茎药材中的豆甾醇含量差异也比较大,通过比较,芭蕉茎药材的豆甾醇含量均大于同一植株芭蕉根的豆甾醇含量,其差异有统计学意义。而芭蕉叶中没有检测到羽扇豆酮和豆甾醇,可能含量过低导致未能被检测出来。结果见表7。
3.5.2. 含量测定结果主成分分析
将28批不同产地、不同部位芭蕉药材的羽扇豆酮和豆甾醇的含量数据导入SIMCA 11.5进行处理。主成分方差累计贡献率和得分图见图4和图5,从主成分方差累计贡献率来看,预测力R2X、Q2分别为0.984,0.871,均高于0.5,说明建立的模型具有较高的预测率和稳定性,两主成分能反映出样品信息。从图5可知,根的含量聚为一大类,茎的含量聚为两类,主成分得分图可以将根与茎明显区分开,表明同植株芭蕉根、茎、中羽扇豆酮和豆甾醇含量具有一定的差异。
Table 7. Analysis results of content difference (n = 14)
表7. 含量差异性分析结果(n = 14)
与芭蕉根比较,*表示具有显著性差异(P < 0.05),**表示具有极显著性差异(P < 0.01)。
Figure 4. Cumulative contribution rate of principal component variance
图4. 主成分方差累计贡献率图
Figure 5. PCA score chart of principal component analysis
图5. 主成分分析PCA得分图
3.5.3. 含量测定结果聚类分析
将含量测定结果导入SPSS26.0软件进行系统聚类,将不同产地的同一植株不同部位芭蕉药材的羽扇豆酮和豆甾醇含量标准化组成28 × 2阶原始数据矩阵,采用组之间连接法,以欧式距离(Euclidean)为样品测度。结果表明,14批芭蕉根部位有13批聚为第I大类,仅有S23聚为第三类,而14批芭蕉茎部位有9批聚为第II、III类,聚类分析结果与主成分分析结果一致,聚类分析树状图见图6;因此芭蕉茎与芭蕉根部位羽扇豆酮与豆甾醇的含量的差异较明显。
Figure 6. Cluster analysis diagram of content
图6. 含量的聚类分析图
4. 讨论
4.1. 色谱条件及提取方式优化
查阅文献,羽扇豆酮的最大吸收波长为206 nm [7],豆甾醇为210 nm [8],因此比较206 nm,210 nm,254 nm等波长下同时对羽扇豆酮和豆甾醇的吸收图谱情况,结果发现在206 nm下羽扇豆酮和豆甾醇有最大吸收,且不受其它色谱峰的干扰。在考察流动相时,比较了甲醇–水;乙腈–水;甲醇–乙腈等不同流动相不同比例的系统,结果选用甲醇–乙腈(体积比50:50)作流动相时,供试品色谱图中各峰分离度最好,且各峰信号强度最大,羽扇豆酮和豆甾醇的分离效果较好,且基线平稳。流速则考察了0.6 ml/min,0.8 ml/min,1.0 ml/min,发现流速在0.8 ml/min时,能达到较好的分离效果。同时还考察了25℃,30℃,35℃的柱温,在30℃能达到理想的分离效果,故柱温采用30℃。
4.2. 含量结果分析
在42批芭蕉药材中,在芭蕉根、芭蕉茎中均能检测到羽扇豆酮和豆甾醇,而在芭蕉叶中未能检测到,其原因可能是含量较低,说明在芭蕉根、茎和叶中,羽扇豆酮和豆甾醇主要存在于芭蕉根和茎中。
研究发现同植株芭蕉药材不同部位的羽扇豆酮和豆甾醇的含量存在较大差异,14批芭蕉根药材中羽扇豆酮和豆甾醇的含量在94.46~917.23 µg/g和117.27~315.08 µg/g之间;芭蕉茎中羽扇豆酮和豆甾醇的含量在180.82~1667.86 µg/g和271.26~1186.74 µg/g之间,统计学分析结果显示,芭蕉茎药材中的羽扇豆酮和豆甾醇的含量均显著高于同植株的芭蕉根,有统计学意义(P < 0.05),主成分分析结果与聚类分析结果均表明,芭蕉茎与芭蕉根部位羽扇豆酮和豆甾醇的含量差异较明显。提示在选择豆甾醇的药材来源时,可选择芭蕉茎代替芭蕉根作为豆甾醇来源较好。因此,建议将芭蕉茎作为羽扇豆酮的主要药材来源,可避免大量采挖芭蕉根而导致的生态平衡破坏。
5. 小结
综上所述,本文建立HPLC法同时测定芭蕉药材中不同部位羽扇豆酮和豆甾醇含量的方法准确、简便、快捷,实用性强,本研究结果提示芭蕉根和芭蕉茎药材均可以作为羽扇豆酮和豆甾醇原药材来源,为扩大羽扇豆酮的原料药材资源以及芭蕉茎替代芭蕉根作为羽扇豆酮来源提供了参考和科学依据。
基金项目
国家自然科学基金资助项目(No.81860722)。
NOTES
*通讯作者。